Multiplicación clonal in vitro e in vivo de la especie forestal nativa Aniba perutilis Hemsley

Abstract

Resumen: Se planteó una metodología para el establecimiento in vitro e in vivo de Aniba perutilis, árbol nativo colombiano, actualmente en grave estado de amenaza. En la primera etapa, se emplearon semillas que fueron sometidas a la acción de tres desinfectantes (NaOCl, HgCl2 y AgNO3) en diferentes concentraciones y tiempos de exposición, con el fin de obtener plántulas asépticamente germinadas. Para obtener un medio de desarrollo e inducir la formación de brotes, se empleó WPM, evaluando la acción de los reguladores de crecimiento BAP, KIN, AIA, ANA y GA3 en diferentes concentraciones. En la fase de enraizamiento, se emplearon las auxinas ANA y AIB en diferentes concentraciones, así como los medios de cultivo MS y WPM con sus sales reducidas a la mitad y diferentes concentraciones de AIA y ANA. En la segunda etapa, realizada en plantas establecidas en vivero, se llevaron a cabo tres tipos de corte, Distal, Medio y Basal (según la distancia a la base de la planta), con el fin de obtener, plantas donantes de yemas axilares y mini esquejes para enraizar. En este trabajo, se consolida el uso de NaOCl por 15 minutos, como tratamiento óptimo de desinfección, para obtener un porcentaje de supervivencia superior al 50%. El medio WPM suplementado con BAP 3mg/L y 1,5 mg/L de GA3 favoreció el establecimiento de 0,6 brotes/explante con longitud promedio de 0,82cm. Sin embargo, su baja capacidad de enraizamiento permite catalogarla como recalcitrante al cultivo in vitro. En condiciones in vivo, cortes a la altura media de las plantas, promueven la formación de 1,33 brotes/explante y 66,67% de enraizamiento en los mini esquejes, constituyéndose como herramienta clave en la propagación de la especie.

Abstract: A method for in vitro e in vivo multiplication of Aniba perutilis, a native colombian tree species, critically endangered, was developed. In the first phase, seeds were submitted to three disinfectants (NaOCl, HgCl2 and AgNO3) in different concentrations and time of exposure, in order to obtain aseptically germinated seedlings. With the purpose of getting a development culture medium and to induce bud formation, WPM with BA, KIN, IAA, NAA and GA3 in different concentrations were evaluated. In rooting phase, NAA and IBA were used, as well as MS and WPM with their salts half reduced and IAA and NAA were utilized. In the second stage, carried out in nursery garden plants, three types of cuts Distal, Medium and Basal (according to the distance to the base of the plant) were made, in order to obtain, donor plants of axillary buds and mini cuttings for rooting. In this work, using NaOCl for 15 minutes is considered as optimal disinfection treatment to obtain a survival rate above 50%. The WPM medium supplemented with BA 3 mg /L and 1.5 mg /L GA3 favored the establishment of 0.6 shoots/explant with an average length of 0.82 cm. However, their low rooting capacity allows classifying as recalcitrant to in vitro culture. In vivo conditions, to make Medium cuts in the plants, promote the formation of 1.33 shoots/explant and 66.67% rooting in mini cuttings, becoming a key tool in the propagation of this specie.