Establecimiento de un protocolo de propagación in vitro de morera (Morus sp.) para el suministro de material de siembra en la cadena serícola en el departamento del Cauca-Colombia

Abstract

La planta de morera (Morus spp.) es la principal fuente de alimento del gusano de seda (Bombyx mori L.) razón por lo cual se constituye en un factor determinante en la sericultura. La morera se propaga convencionalmente por estacas, acodos e injertos; métodos que suelen ser lentos, con poco desarrollo radicular y exigentes en el uso de mano de obra. Esta investigación permitió establecer un protocolo de propagación in vitro de M. alba cultivar Kanva 2, usando como explante yemas apicales y axilares en dos tratamientos de desinfección. El establecimiento in vitro se logró empleando yemas apicales desinfectadas con etanol (70%) durante 1 min, hipoclorito de sodio (1,5%) durante 10 min. El medio de cultivo MS (1962) fue suplementado con diferentes reguladores de crecimiento: Ácido Giberélico (GA3) 0.1 mg/L, Ácido 1-Naftalen-Acético (ANA) 0.01 mg/L, 6-Bencil-Amino-Purina (BAP) 0, 0.5, 1.0 mg/L o Kinetina (KIN) 0, 0.5, 1.0 mg/L. La mayor tasa de propagación 1:3 se obtuvo en explantes establecidos en medio MS suplementado con 0,5 mg/L de BAP. Los vástagos provenientes del tratamiento con mayor tasa de propagación, fueron subcultivados en medio MS suplementado con auxinas para inducción de raíces: ANA (0, 0.25, 1.0 mg/L) o Ácido Indol-Acético (IAA) (0, 0.25, 1.0 mg/L) para la inducción de raíces. El mayor porcentaje de enraizamiento, se obtuvo en medio MS suplementado con 1 mg/L de ANA. Las plántulas obtenidas bajo condiciones in vitro se transfirieron a un sustrato esteril contituido por suelo y arena en proporciones 1:3, la transferencia a invernadero se realizó de forma gradual ajustando la humedad relativa y la intensidad lumínica, logrando un porcentaje de supervivencia del 85%.

//Abstract: The mulberry plant (Morus spp.) Is the main source of feed for the silkworm (Bombyx mori L.), which is why it is a determining factor in sericulture. The mulberry is propagated conventionally by stakes, layers and grafts; methods that tend to be slow, with little root development and demanding in the use of labor, which restricts the use and access to new cultivars of mulberry. This investigation allowed us to establish an in vitro propagation protocol of M. alba cultivar Kanva 2, using apical and axillary buds as explant in two disinfection treatments. In vitro establishment was achieved using apical buds disinfected with ethanol (70%) for 1 min, sodium hypochlorite (1.5%) for 10 min. The culture medium MS (1962) was supplemented with different phytoregulators: Gibberellic acid (GA3) 0.1 mg / L, 1-Naphthalene-Acetic acid (ANA) 0.01 mg / L, 6-Benzyl-Amino-Purine (BAP) 0, 0.5, 1.0 mg / L or Kinetin (KIN) 0, 0.5, 1.0 mg / L. The highest propagation rate 1:3 was obtained in established explants in MS medium supplemented with 0.5 mg / L of BAP. Scions from the treatment with the highest propagation rate were subcultured in MS medium supplemented with auxins for root induction: ANA (0, 0.25, 1.0 mg / L) or Indole-Acetic Acid (IAA) (0, 0.25, 1.0 mg / L) for the induction of roots. The highest percentage of rooting was obtained in MS medium supplemented with 1 mg / L of ANA. Seedlings obtained under in vitro conditions were transferred to a sterile substrate constituted by soil and sand in 1: 3 proportions, the transfer to greenhouse was done gradually adjusting the relative humidity and light intensity, achieving a survival percentage of 85%.