Morfología, viabilidad y germinación in vitro en semillas de especies de Passiflora L. distribuidas en Colombia

dc.contributor.advisorOcampo Pérez, John A
dc.contributor.advisorEscobar Pérez, Roosevelt Humberto
dc.contributor.authorParrado Palma, Lina Marcela
dc.contributor.orcidParrado Palma, Lina [0009-0006-2586-136X]spa
dc.contributor.researchgroupGrupo de Investigación en Recursos Fitogenéticos Neotropicalesgirfinspa
dc.date.accessioned2024-01-29T18:33:11Z
dc.date.available2024-01-29T18:33:11Z
dc.date.issued2023-09-20
dc.descriptionIlustraciones, fotografías,tablasspa
dc.description.abstractColombia es el país con mayor diversidad de especies del género Passifora L, tanto silvestre como cultivadas. Sin embargo, esta riqueza se ve amenazada por múltiples acciones antrópicas y la falta de estrategias para la conservación de estos recursos biológicos. Por tal razón, el objetivo de esta investigación fue estudiar la morfología, viabilidad y germinación in vitro en semillas de cuatro especies colombianas del género Passiflora L. (P. quimbayensis, P. kumandayi, P. sp. nov. y P. ligularis). La metodología fue establecida por medio de una prueba de viabilidad de las semillas (tetrazolio), una siembra en vivero y técnicas de micropropagación: (1) obtención del material vegetal, (2) establecimiento aséptico del cultivo y (3) multiplicación del material vegetal. Un diseño experimental completamente al azar con tres tratamientos por tres repeticiones y una muestra de 33 unidades experimentales por cada tratamiento fueron analizados con el programa R-Studio. Los resultados mostraron que las semillas obtuvieron entre el 80-95% de viabilidad, exceptuando P. kumandayi con embriones no viables. En la siembra en vivero, P. ligularis presentó un porcentaje de germinación del 70% de germinación a los 11 días, mientras que P. quimbayensis solo alcanzó el 3% de germinación a los 60 días. En el protocolo de conservación in vitro, el mejor tratamiento de asepsia (T1) con hipoclorito de sodio al 6% mostró la menor contaminación por patógenos (˂25%), aunque en P. sp. nov. la contaminación fue del 100%. El despunte apical de las semillas mostró los mayores porcentajes de germinación, con un 98% y 99% en P. ligularis y P. quimbayensis, respectivamente. El método de cultivo in vitro permitió la regeneración de las semillas de P. quimbayensis, aunque en las raíces hubo formación de células no definidas con callosidades, mientras que en P. ligularis el enraizamiento fue normal sin presencia de callo. El método de conservación in vitro implementado en esta investigación muestra resultados positivos para la propagación de P. ligularis y debe ser ajustado para las especies silvestres estudiadas. (Texto tomado de la fuente)spa
dc.description.abstractColombia is the country with the greatest diversity of the genus Passifora L. species, both wild and farmed. However, this richness looks threatened by several anthropic actions, as well as the lack of strategies to preserve these biological resources. For that reason, the goal of this research was to study the morphology, viability, and in vitro germination in seeds of four species of the genus Passiflora L. (P. quimbayensis, P. kumandayi and P. sp. nov. and P. ligularis) distributed in Colombia. The methodology was established through a seed viability test (tetrazolium), “in nursery” sowing and micropropagation techniques: (1) obtaining plant material, (2) aseptic establishment of the culture and (3) plant material multiplication. A completely randomized experimental design with three treatments for three repetitions and a sample of 33 experimental units for each treatment were analyzed with the “R-Studio” program. The outputs displayed that the seeds had a viability between 80- 95%, except the "P. kumandayi" with non-viable embryos. In the “in nursery” sowing, “P. ligularis” showed a 70% germination percentage at 11 days, whereas the “P. quimbayensis” only reached a 3% germination percentage at 60 days. In the “in vitro” conservation protocol, the best aseptic treatment (T1) with 6% sodium hypochlorite showed the least contamination by pathogens (less than 25%), even though in “P. sp. nov.” the contamination was 100%. The apical sprouting of the seeds showed up the highest germination, percentages with 98% and 99% in "P. ligularis" and "P. quimbayensis", respectively. The “in vitro” culture method allowed the generation of “P. quimbayensis” seeds, although there was a formation of undefined cells with calluses in the roots. Whereas in "P. ligularis" the rooting was normal without presence of callus. The “in vitro” conservation method that was implemented in this research shows positive results for the “P. ligularis” propagation and should be adjusted for the studied wild specieseng
dc.description.curricularareaCiencias Naturales Y Biodiversidad.Sede Palmiraspa
dc.description.degreelevelMaestríaspa
dc.description.degreenameMagíster en Ciencias Biológicasspa
dc.description.methodsLa metodología fue establecida por medio de una prueba de viabilidad de las semillas (tetrazolio), una siembra en vivero y técnicas de micropropagación: (1) obtención del material vegetal, (2) establecimiento aséptico del cultivo y (3) multiplicación del material vegetal. Un diseño experimental completamente al azar con tres tratamientos por tres repeticiones y una muestra de 33 unidades experimentales por cada tratamiento fueron analizados con el programa R-Studio.spa
dc.format.extentxii, 82 páginasspa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.instnameUniversidad Nacional de Colombiaspa
dc.identifier.reponameRepositorio Institucional Universidad Nacional de Colombiaspa
dc.identifier.repourlhttps://repositorio.unal.edu.co/spa
dc.identifier.urihttps://repositorio.unal.edu.co/handle/unal/85486
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad Nacional de Colombiaspa
dc.publisher.branchUniversidad Nacional de Colombia - Sede Palmiraspa
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Agropecuariasspa
dc.publisher.placePalmira, Valle del Cauca, Colombiaspa
dc.publisher.programPalmira - Ciencias Agropecuarias - Maestría en Ciencias Biológicasspa
dc.relation.referencesAguacía, L., Miranda, D., & Carranza, C. (2015). Effect of fruit maturity stage and fermentation period on the germination of passion fruit (Passiflora edulis f. flavicarpa Deg.) and sweet granadilla seeds (Passiflora ligularis Juss.). Agronomía Colombiana, 33(3), 305–314. https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v33n3.52460spa
dc.relation.referencesAgronet, (2011). Estadísticas, Reportes estadísticos, Principales departamentos productores de maracuyá ordenados por área 2010. http://www.agronet.gov.co/agronetweb1/Estad%C3%ADsticas/ReportesEstad%C3% ADsticos.aspxspa
dc.relation.referencesAlbacete, S. (2007). Cultivo in vitro de Passiflora alata, una forma de conservación genética. 1, 69–72.spa
dc.relation.referencesAmugune, N., Gopalan, H., & Bytebier, B. (2011). Leaf Disc Regeneration of Passion Fruit. African Crop Science Journal, 1(2). https://doi.org/10.4314/acsj.v1i2.69896spa
dc.relation.referencesArias, J., Ocampo, J., & Urrea, R. (2014). La polinización natural en el maracuyá (Passiflora edulis f. flavicarpa degener) como un servicio reproductivo y ecosistémico. Revista Agronómica Mesoamericana. 25 (1), 73-83. Doi: 10.15517/am.v25i1.14200spa
dc.relation.referencesArias, J., Ocampo, J., & Urrea, R. (2015). Sistemas de polinización en la Granadilla (Passiflora ligularis Juss.) como base para estudios genéticos y de conservación. Acta Agron.spa
dc.relation.referencesAzofeifa, Á. (2009). Problemas de oxidación y oscurecimiento de explantes cultivados in vitro. Agronomía mesoamericana, 20(1), 153-175.spa
dc.relation.referencesBalaguera, H., Álvarez, J., & Cárdenas, J. (2010). Efecto de la estratificación fría y la cobertura plástica en semillas de gulupa (Passiflora edulis Sims.) para la obtención de plántulas. Rev. UDCA Actualidad & Divulgación Científica. 13(2):89-97.spa
dc.relation.referencesBaskin, C., & Baskin, J. (1998). Seeds: ecology, biogeography, and, evolution of dormancy and germination. Elsevier.spa
dc.relation.referencesBaskin, J., Baskin, C. (2014). A classification system for seed dormancy. Seed Science Research, v.14, n.1, p.1-16. DOI: <https://doi.org/10.1079/SSR2003150>spa
dc.relation.referencesBecerra, D. (2003). Efecto del origen del material vegetal y la edad sobre la capacidad morfogénica de dos especies de Passiflora (Passiflora mollissima H.B.K. Bailey y Passiflora edulis var. flavicarpa) cultivadas in vitro. (“Efecto del origen del material vegetal y la edad sobre la capacidad ...”) 177.spa
dc.relation.referencesBellon, G., Faleiro, F., Junqueira, K., Junqueira, N., dos Santos, C., Braga, M., & Guimaraes, C. (2007) Genetic variability of wild and commercial passion fruit (Passiflora edulis Sims.) accessions using RAPD markers. Rev Bras Frutic 29:124–127spa
dc.relation.referencesBenson, W., Brown, K., & Gilbert, L. (1976). Coevolution of plants and herbivores: Passion vine butterflies. Evolution 29: 659-680.spa
dc.relation.referencesBernal, C., Duarte, L., Bohórquez, M., Johanna, E., & Constantino, J. (2018). Embriogénesis no zigótica en Passiflora maliformis Nonzygotic. Revista peruana de biología, 25(3), 281-290.spa
dc.relation.referencesBewley, J., & Black, M. (1982). Physiology and biochemistry of seeds in relations to germination. Vol. 2. Viability, dormancy and environmental control. Springer-Verlag, Berlin.spa
dc.relation.referencesBonilla, M., Aguirre, A., & Agudelo, M. (2015). Morfología de Passiflora: una guía para la descripción de sus especies. Revista de Investigación Agraria y Ambiental, 6(1), 91–109. https://hemeroteca.unad.edu. co/index.php/riaa/issue/view/124/84spa
dc.relation.referencesBruckner, C., & Otoni, W. (1999). Hibridação em maracujá. In: Borém, A. (Ed.), Hibridação artificial de plantas. UFV, Viçosa: 379-399.spa
dc.relation.referencesBüchert, A., & Mogens, J. (2001). The fragility of extreme specialization: Passiflora mixta and its pollinating hummingbird Ensifera ensifera. Journal of Tropical Ecology 17: 323-329.spa
dc.relation.referencesBuitrago, A., MacDougal, J., & Coca, L. (2018). Passiflora kumandayi (Passifloraceae), a new species from the colombian Andes in a new section within subgenus Decaloba. Phytotaxa, 344(1), 13–23. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.344.1.2spa
dc.relation.referencesCardozo, H. (1988). efecfo de la escarificacion y la dosis del ácido giberélico (ag 3) en la germinacion de semilla de curuba (Passiflora mollisima). Acta Biológica Colombiana 1 (4):127-132.spa
dc.relation.referencesCheca, O., Rosero, E., & Eraso, I. (2011). Colección y caracterización morfoagronómica del subgénero Tacsonia en la zona Andina del departamento de Nariño, Colombia. Revista Facultad Nacional de Agronomía de Medellín 64(1): 5893-5907.spa
dc.relation.referencesCopete, A. (2011) Efecto de acondicionamientos sobre la calidad fisiológica de semillas y plántulas de Passiflora edulis. Universidad Javerianaspa
dc.relation.referencesCoppens, G., Lironde, B., & Ps, T. (2003). Promesas de las pasifloras. Memorias X Seminario Nacional y IV Internacional Sobre Especies Promisorias (CD)., 1–35.spa
dc.relation.referencesCórdoba, S., Guzmán, J., Pérez, B., Zuñiga, P., & Pacheco, R. (2010). Propagación de Especies Nativas de la Región Andina, 238. Retrieved from http://jbbrepositorio.metabiblioteca.org/bitstream/001/151/2/1-36.pdfspa
dc.relation.referencesda Silva, A., Hilst, P., Fernandes, D., & Rogalski, M. (2019). Overcoming dormancy of Passiflora elegans Mast. (Passifloraceae) seeds. Revista Verde de Agroecologia e Desenvolvimento Sustentável, 14(3), 406–411.https://doi.org/10.18378/rvads.v14i3.6552spa
dc.relation.referencesDavis, P. (2004). Plants hormones. First Edition. Kluwer Academic Publishers, United States.spa
dc.relation.referencesDe Candolle, A. (1828). Memoires de la Societé de Physique et d´Histoire Naturelle de Geneve (Memoires of the Society of Physics and Natural History of Geneva), 1,434-436.spa
dc.relation.referencesDe Jesus, J., Junghans, T., da Silva Ledo, A., de Lima Silva, F., Souza, E., Hongyu, K., & Souza, F. (2022). Cryopreservation and germinative behavior of Passiflora spp. seeds. 3 Biotech, 12(10). https://doi.org/10.1007/s13205-022-03329-6spa
dc.relation.referencesDe Klerk, G., Arnholdt-Schmitt, B., Lieberei, R., & Newmann, K. (1997). Regeneration of roots, shoots, and embryos: physiological, biochemical and molecular aspects. Biologia Plantarum 39(1), 53-66.spa
dc.relation.referencesDelanoy, M., van Damme, P., Scheldeman, X., & Beltran, J. (2006). Germination of Passiflora mollissima (Kunth) L.H. Bailey, Passiflora tricuspis Mast. and Passiflora nov. sp. seeds. Scientia Horticulturae, 110(2), 198–203. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2006.07.007spa
dc.relation.referencesDhawan, K., Dhawan, S., & Sharma, A. (2004). Passiflora: a review update. Journal of Ethnopharmacology, 94(1), 1–23. https://doi.org/10.1016/J.JEP.2004.02.023spa
dc.relation.referencesDodds,J. (1991). In vitro Methods for Conservation of Plant Genetic Resources. Chapman and Hall.spa
dc.relation.referencesDornelas, M. & Carneiro, M. (1994). Estudios de cultivo de tejidos en especies de Passiflora. Cultivo de tejidos y órganos de células vegetales, 36, 211-211.spa
dc.relation.referencesEllis, R., Hong, T., & Roberts, E. (1985). Handbook of seed technology for genebanks. Vol. II: Compendium of specific germination. Information and test recommendations. International Board for Plant Genetic Resources (IBPGR), Roma.spa
dc.relation.referencesEscobar, L. (1988a). Passifloraceae. Flora de Colombia 10. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia. 138pp.spa
dc.relation.referencesEscobar, L. (1991). La Sistemática y evolución de las pasifloras. Memorias Primer Simposio Internacional de pasifloras, Universidad Nacional de Colombia Sede Palmira. 51 p.spa
dc.relation.referencesFajardo, D., Angel, F., Grum, M., Tohme, J., Lobo, M., Roca, W., & Sanchez, I. (1998). Genetic variation analysis of the genus Passiflora L. using RAPD markers. Euphytica, 101(3), 341–347. https://doi.org/10.1023/A:1018395229851spa
dc.relation.referencesFAO. (1996). Conservación y utilización sostenible de los recursos fitogenéticos para la alimentación y la agricultura: Plan de acción mundial e informe sobre el estado de los recursos fitogenéticos en el mundo. Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación, Italia. 10p.spa
dc.relation.referencesFAO. (Ed.). (2000), Políticas y programas de semillas en América Latina y el Caribe, Merida, Mexico, FAO, Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación, estudio FAO producción y protección vegetal 164.spa
dc.relation.referencesFay, M. (1994) ln what situations is in vitro culture appropriate to plant conservation? Biodiversity and Conservation 3, 176-183.spa
dc.relation.referencesFernando, J., Vieira, M., MacHado, S., & Appezzato-Da-Glória, B. (2007). New insights into the in vitro organogenesis process: The case of Passiflora. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 91(1), 37–44. https://doi.org/10.1007/s11240-007-9275-7spa
dc.relation.referencesFernando, J., (2011). Morfología y tratamientos pregerminativos de semillas de granadilla (Passiflora ligularis Juss).spa
dc.relation.referencesFerreira, F. (2005) Recursos genéticos de Passiflora. In: Faleiro FG (ed) Maracuja´: germoplasma e melholramiento genético Embrapa Cerrados, Planaltina, Brazil. Embrapa, Planaltina, pp 41–51spa
dc.relation.referencesFeuillet, C. (2002). A new series and three new species of Passiflora subgenus Astrophea from Guianas. Brittonia 54: 18-29.spa
dc.relation.referencesFeuillet, C. (2004). Passiflora phellos, a new species in subgenus Passiflora (Passifloraceae). Novon 14: 285-287.spa
dc.relation.referencesFick, S. & Hijmans, R. (2017). Worldclimf 2: New 1-km spatial resolution climate surfaces for global land areas. International Journal of Climatology 37: 4302–4315.spa
dc.relation.referencesFranco, Y., Alzate, F., & Peláez, J. (2007). Factores ambientales incidentes en la población de Xylocopa y su efecto en el cultivo de granadilla en tres veredas del municipio de Guarne (Colombia). Rev. Uni. Cat. Ori. 24, 73-88.spa
dc.relation.referencesGarcía, O. & Pacheco, G., Vianna, M. & Mansur, E. (2011). In vitro conservation of passiflora suberosa L. Slow growth and cryopreservation. Cryo letters. 32. 377-88.spa
dc.relation.referencesGremillion, K. (1989). The development of a mutualistic relationship between humans and maypops (Passiflora incarnata L.) in the Southeastern United States. Journal of Ethnobiology 9: 135–158.spa
dc.relation.referencesGonzales, C. (2004). propagación in vitro de especies nativas con potencial agroalimetario pertenecientes a las familias passifloraceae y solanaceae. Proyecto de uso sostenible de los recursos vegetales del distrito capital y la región, JBB.spa
dc.relation.referencesGutiérrez M., Miranda D., & Cárdenas J. (2011). Efecto de tratamientos pregerminativos sobre la germinación de semillas de gulupa (Passiflora edulis Sims.), granadilla (Passiflora ligularis Juss.) y cholupa (Passiflora maliformis L.). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas (Colombia) 5(2): 209-219.spa
dc.relation.referencesHarms, H. (1925). Passifloraceae. In Die naturlichen Pflanzenfamilien 21, 470-507.spa
dc.relation.referencesHartmann, H., Kester, D., Davies, F., & Geneve, R. (2002). Plant propagation: principles and practices. 7th ed. Prentice Hall, New Jersey, NJ.spa
dc.relation.referencesHidalgo, R. (1991). Conservación ex situ. En: Técnicas para el manejo y uso de los recursos genéticos vegetales (R. Castillo, J. Estrella y C. Tapia, eds.). Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Ecuador. p. 71-87.spa
dc.relation.referencesHo, W., & Shii, C. (1986). Universidade Estatudual Paulista. Botucatu. Incompatibility system in passion fruit (Passiflora edulis Sims). Acta Horticulturae 194: 31–38.spa
dc.relation.referencesHong, T., & Ellis, R.H. (1996). A protocol to determine seed storage behaviour (No. 1). Bioversity International.spa
dc.relation.referencesHudson, T., & Dale, L. (1997). Fredsand, Principles of tissue culture for micropropagation, 17: 549-589. In: Plant propagation. Prentice Hall, New Jersey.spa
dc.relation.referencesImig, D. (2013). Estudo taxonômico da família Passifloraceae Juss. no Distrito Federal, Brasil. Tesis. Maestría en Ciencias Biológicas Área de Botánica. Universidade Federal do Paraná. pp. 103.spa
dc.relation.referencesIPGRI, International Plant Genetics Resources Institute. (1991). Dictionary of plant genetic resources. Elsevier Science Publishers, Amsterdam, The Netherlands. 187 p.spa
dc.relation.referencesISTA. (2009). International Seed Testing Association. International rules for seed testing, Chapter 5 Germination test. Bassersdorf, Suiza.spa
dc.relation.referencesISTA. (1996). Internationnl Rules for Seed Teszing. International Seed Testing Association, Zúrich, 335 pp.spa
dc.relation.referencesJiménez, Y. (2006). El cultivo de la gulupa Passiflora edulis Sims. Trabajo de grado - Horticultura. Facultad de Agronomía, Universidad Nacional de Colombia. Manizales, Colombia.spa
dc.relation.referencesJørgensen, P. (2009) Preliminary conservation status of accepted species in Passiflora subg. Decaloba: http://www. mobot.org/mobot/research/passiflora/conservation_status_accepted_species.shtml. Accessed 29 Mar 2009spa
dc.relation.referencesJørgensen, M., Sheth, S., Consiglio, T., & Jimenez, I. (2009) Assessing conservation status of Passiflora. http://www.mobot. org/mobot/research/passiflora/conservation.shtml. Accessed 13 Feb 2009spa
dc.relation.referencesJussieu, A. (1805). Second Mémoire sur la famille des Passiflorées, et partculiérement sur quelques espécies Nouvelles du genre Tacsonia (Second dissertation of the genus Passiflora family, and particularly on some new species of the genus Tacsonia). Annales du museum d´Historie Naturelle, 6: 388-96://botanicus.org/page/1535245spa
dc.relation.referencesKarp A (1989) Can genetic instability be controlled in plant tissue culture? IAPTC Newsl 58:2–11spa
dc.relation.referencesKay, E. (2001). Observations on the pollination of Passiflora penduliflora. Biotropica 33: 709– 713.spa
dc.relation.referencesKillip, E. (1938). The American species of Passifloraceae. Field Mus Nat Hist Bot Series. 19: 613.spa
dc.relation.referencesKrosnick, S., Ford, A., & Freudenstein, J. (2009). Taxonomic revision of Passiflora subgenus Tetrapathea including the monotypic genera Hollrungia and Tetrapathea (Passifloraceae), and a new species of Passiflora. Systematic Botany, 34(2), 375–385. https://doi.org/10.1600/036364409788606343spa
dc.relation.referencesKugler, E. & King, L. (2004). A brief history of the Passionflower. 15-26 pp. In Ulmer T., and MacDougal J.M. (eds). Passiflora: passionflowers of the word. Timber Press Portland, Oregon. 430 p.spa
dc.relation.referencesLarkin, P., & Scowcroft, W. (1981). Somaclonal varíation—a novel source of variability from cell cultures for plant improvement. Theoretical and applied genetics, 60(4), 197-214.spa
dc.relation.referencesLeal, C. (2003). Organogénesis in vitro a partir de discos de hoja de Passiflora mollissima HBK Bailey (curuba) infectados con Agrobacterium tumefaciens. Trabajo de Grado para la optar por el título de Biología, Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá.spa
dc.relation.referencesLobo, M. (2006). Recursos genéticos y mejoramiento de frutales andinos: una visión conceptual. Rev. Cor-poica Cienc. Tecnol. Agropecu. 7(2), 40-54spa
dc.relation.referencesLombardi, S., da Silva Passos, I., Nogueira, M., & Appezzato-Da-Glória, B. (2007). In vitro shoot regeneration from roots and leaf discs of Passiflora cincinnata mast. Brazilian Archives of Biology and Technology, 50(2), 239–247. https://doi.org/10.1590/s1516-89132007000200009spa
dc.relation.referencesLorenz-Lemke, A., Muschner, V., Bonatto, S., Cervi, A., Salzano, F., & Freitas, L. (2005). Phylogeographic inferences concerning evolution of Brazilian Passiflora actinia and P. elegans (Passifloraceae) based on ITS (nrDNA) variation. Ann Bot 95:799–806spa
dc.relation.referencesMacDougal, J. (1992). New species of Passiflora subg. Plectostemma (Passifloaceae). Novon 2(4): 358-367.spa
dc.relation.referencesMacDougal, J. (1994). Revision of Passiflora section Decaloba, Pseudodysosmia (Passifloraceae). Systematic Botany Monographs 14: 146 p.spa
dc.relation.referencesManjarrés, E., & Perea, M. (2012). Establecimiento de un protocolo de propagacion de Gulupa (Passiflora edulis SIMS.) a partir de embriones cigoticos y yemas axilares. Agronomía Colombiana, 20(2), 53–64.spa
dc.relation.referencesMantilla, A. (2008). Desarrollo y germinación de semillas. pp. 537-558. En: Azcón-Bieto, J. & Talon, M. (eds.). Fundamentos de fisiología vegetal. Interamericana-McGraw-Hill, Madrid.spa
dc.relation.referencesMarostega, T., Luz, P., Tavares, A, Neves, L & Paiva, S., (2017). Methods of breaking seed dormancy for ornamental passion fruit species, Ornam Hort 23(1):72-78. https://doi.org/10.14295/oh.v2311.982spa
dc.relation.referencesMasters, M. (1871). XIX. Contributions to the natural history of the Passifloraceae. Trans. Linn. Soc. London 27:593-645, tab. 64, 65.spa
dc.relation.referencesMcCormick, S. (1982). Flavonoid chemistry of Passiflora subgenus Plectostemma. Ph. D. dissertation, Department of Botany, The University of Texas, Austin, Texas.spa
dc.relation.referencesMedina, C., & Lobo, M. (2000a). Curuba (Passiflora mollisima (H.B.K.) Bailey). En: Caracteriaçao de Frutas Nativas da América Latina. Edição comemorativa do 30° aniversario da Sociedade Brasileira de Fruticultura. pp.35-37.spa
dc.relation.referencesMedina, C., & Lobo, M. (2000b). Granadilla (Passiflora ligularis Juss.). En: Caracteriaçao de Frutas Nativas da América Latina. Edição comemorativa do 30° aniversario da Sociedade Brasileira de Fruticultura. pp. 38-40.spa
dc.relation.referencesMedina, C., Lobo, M., & Correa, R. (2000). Caracterización morfológica y química de pasifloras andinas como apoyo al desarrollo de estas especies. En: Memorias 3er Seminario de Frutales de Clima Frío Moderado. Centro de Desarrollo Tecnológico de Frutales, C.D.T.F. Manizales, noviembre 15 al 17 de 2000. pp. 13-18.spa
dc.relation.referencesMedina, C., & Lobo, M. (2004). Conocimiento de la variabilidad morfológica y química de Passifloras andinas (Passifloraceae). En: Memorias VIII Congreso Venezolano de Fruticultura, 6 al 9 de julio de 2004. Mara-caibo, Estado Zulia, Venezuela.spa
dc.relation.referencesMiller, A. L., & Peters, J. (2010). Tetrazolium Testing HandBook. Association of Official Seed Analysts (AOSA) / Society of Commercial Seed Technologists (SCST).spa
dc.relation.referencesMiranda D., Perea M., & Magnitskiy S. (2009). Propagación de especies pasifloráceas. En: Miranda D., Fischer G., Carranza C., Magnitsky S., Casierra F., Piedrahita W., Flárez L. (Ed). Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba. Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Bogotá, Colombia. p: 69-96.spa
dc.relation.referencesMoreno, E. (1984). Análisis físico y biológico de semillas agrícolas. 3a. ed. Universidad Nacional Autónoma de México.spa
dc.relation.referencesMurashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol plant, 15, 473-497.spa
dc.relation.referencesMurashige, T. (1974). Plant propagation through tissue cultures. Annual review of plant physiology, 25(1), 135-166.spa
dc.relation.referencesNishida, T. (1958). Pollination of the passion fruit in Hawaii. Journal of Economic Entobotanic 51: 146–149.spa
dc.relation.referencesOcampo, J., Coppens D’eeckenbrugge, G., Restrepo, M., Jarvis, A., Salazar, M., & Caetano, C. (2007.). Diversity of Colombian Passifloraceae: biogeography and an updated list for conservation. http://www.igac.gov.cospa
dc.relation.referencesOcampo, J. (2007). Study of the genetic diversity of genus Passiflora L. (Passifloraceae) and its distribution in Colombia. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.1073.7126spa
dc.relation.referencesOcampo, J., Coppens D’eeckenbrugge, G., & Jarvis, A. (2010). Distribution of the Genus Passiflora L. Diversity in Colombia and Its Potential as an Indicator for Biodiversity Management in the Coffee Growing Zone. Diversity, 2, 1158–1180. https://doi.org/10.3390/d2111158spa
dc.relation.referencesOcampo, J., & Merlín, Y. (2014). Passiflora de Colombia. Journal of Chemical Information and Modeling, 1(March), 7. https://doi.org/10.1017/CBO9781107415324.004spa
dc.relation.referencesOcampo, J., Arias, J., & Urrea, R. (2016). Interspecific hybridization between cultivated and wild species of genus Passiflora L. Euphytica, 209(2), 395-408spa
dc.relation.referencesOcampo, J., & Coppens d’Eeckenbrugge, G. (2017). Morphological characterization in the genus Passiflora L.: an approach to understanding its complex variability. Plant Systematics and Evolution, 303(4), 531–558. https://doi.org/10.1007/s00606-017-1390-2spa
dc.relation.referencesOcampo, J., Forero, L., & MacDougal, J. (2018). Morphological analysis reveals a new species of Passiflora subgenus Decaloba (Passifloraceae): Passiflora quimbayensis, an endemic species from Colombia. Systematic Botany, 43(1), 231-239spa
dc.relation.referencesOcampo, J., Hurtado, A., & López, W. (2021) Chapter 1: Passiflora: Genetic_Grafting and Biotechnology Approaches. ISBN-13: ‎ 978-1536191080. Nova Science Pub Inc, 1-93spa
dc.relation.referencesOtahola, V., & Diaz, M. (2010). Regeneracion in vitro de Passiflora edulis f. flavicarpa y Passiflora quadrangularis utilizando dos tipos de explante provenientes de plantas adultas y bencilaminopurina. Udo, 10(1), 23–28.spa
dc.relation.referencesPacheco, G., Gagliardi, R., Valls, J., & Mansur, E. (2009) Micropropagation and in vitro conservation of wild Arachis species. Plant Cell Tiss Org Cult99:239–249spa
dc.relation.referencesParra, M. (2013). Acuerdo de competitividad para la cadena productiva de pasifloras en Colombia. Asohofrucol, Cepass, Consejo Nacional de Pasifloras, Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, Bogotáspa
dc.relation.referencesPerea, M. & Tirado, A. (2011). Cultivo de tejidos in vitro. Manual de prácticas de laboratorio. Facultad de Ciencias Departamento de Biología, Universidad Nacional de Colombia. Bogotá, Colombiaspa
dc.relation.referencesPérez, S., Tillett, S., & Escala, M. (2002). Estudio morfológico de la semilla de 51 especies del género Passiflora L. Acta Botánica Venezuelica, 25(1), 67-96.spa
dc.relation.referencesPierik, R. (1990). Cultivo in vitro de las plantas superiores. Madrid, España: Mundi-Prensa.spa
dc.relation.referencesPosada, P. (2012). Estudios del comportamiento fisiológico de la semilla del maracuyá (p. edulis f. flavicarpa degener), la granadilla (p. ligularis juss.) y la gulupa (p. edulis f. edulissims) y zonificación agroecológica como estrategia para una agricultura ecoeficiente y de conservación. Tesis para optar al título de Maestría en Ciencias Biológicas, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia, Sede Palmira.spa
dc.relation.referencesPosada, P., Ocampo, J., & Santos, L. G. (2014). Estudio del comportamiento fisiológico de la semilla de tres especies cultivadas de Passiflora L. (Passifloraceae) como una contribución para la conservación ex situ. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 8(1), 9–19. https://doi.org/10.17584/rcch.2014v8i1.2796spa
dc.relation.referencesRache, L., & Pacheco, J. (2012). Establecimiento de un protocolo de propagación de Physalis peruviana L. a partir de yemas axilares adultas. Ciencia en Desarrollo. 4(1).spa
dc.relation.referencesRajasekharan, P., & Sahijram, L. (2015). In Vitro Conservation of Plant Germplasm Volume 2 View project Adaptation and Development of Medicinal Plant Technologies for Income Generation, Agricultural Diversification and Export Promotion View project. https://doi.org/10.1007/978-81-322-2283spa
dc.relation.referencesRangel, P., Bestete, J., Alves, A., Lopes, C., Romais, E., Campos, W., & Sobreira, R. (2016). Morphometry,’in vitro-ex vitro’germination and tetrazolium testing of stinking passionflower [‘Passiflora foetida’var.’glaziovii’Killip] (Passifloraceae) seeds. Australian Journal of Crop Science, 10(8), 1075–1082. https://doi.org/10.21475/ajcs.2016.10.08.p7175spa
dc.relation.referencesRêgo, M., Rêgo, E., Bruckner, C., Da Silva, E.A., Finger, F. & Pereira, K. (2000) es. Pollen tube behavior in yellow passion fruit following compatible and incompatible crosses. Theoretical and Applied Genetics 101: 685–689.spa
dc.relation.referencesRestrepo, J. (2000). Perspectivas de mejoramiento genético de pasifloras. En: Memorias 3er Seminario de Frutales de Clima Frío Moderado. Centro de Desarrollo Tecnológico de Frutales. Manizales, noviembre 15 al 17 de 2000. pp. 37-50spa
dc.relation.referencesRoca, W., & Mroginski, L. (1991). Cultivo de tejidos en la agricultura: fundamentos y aplicaciones (No. 151). Ciat.spa
dc.relation.referencesRoca, W. & Mroginski, L. (1997). Cultivo de tejidos en la agricultura, fundamentos y aplicaciones. CIAT, Centro Internacional de Agricultura Tropical. Cali, Colombia.spa
dc.relation.referencesRomero, J (2018). Conservación ex situ de semillas de cuatro especies andinas de Passiflora. Jardín Botánico de Bogotá José Celestino Mutis, Subdirección Científica, Grupo Especies y Propagación. Agro productividad: Vol. 11, Núm. 3, marzo. 2018. pp: 75-81. Bogotá, Colombia.spa
dc.relation.referencesSalazar, E., Torrealba, D., Castro, L., & Torrealba, M. (2005). La caseina hidrolizada inhibe el desarrollo de callos provenientes de anteras de cacao cultivadas in vitro. Agronomía Tropical, 55(4), 497-505.spa
dc.relation.referencesSalazar, R. (2010). Historia del cultivo de tejidos vegetales. Recuperado el, 27, 09-13.spa
dc.relation.referencesSánchez, I., Angel, F., Fajardo, D., Castillo, M., Lobo, M., Tohme, J., & Roca, W. (2002). Caracterización molecular, base sólida para el mejoramiento genético de Passifloraceae Juss. Fitotecnia Colombiana 2(1): 1-10.spa
dc.relation.referencesSandoval, A., Forero, F., Cabrera, S., Rivera, J., & Parra, M. (2010). Caracterización de extractos a partir de hojas y flores del maracuyá (Passiflora edulis f. flavicarpa), granadilla (Passiflora ligularis Juss.) y cholupa (Passiflora maliformis L.) del departamento del Huila. In Primer Congreso Latinoamericano de Passiflora (p. 114).spa
dc.relation.referencesSantos, A., Almaguer, F & Barrientos, A. (1994). Tratamientos de semillas y evaluación del crecimiento en plántulas de granada china (Passiflora ligularis Juss) Revista Chapingo 2(1),157-160.spa
dc.relation.referencesSazima, M. & Sazima, I. (1978). Bat pollination of the passionflower, Passiflora mucronata, in southeastern Brazil. Biotropica 10: 100-109.spa
dc.relation.referencesSegura, S., Coppens, G., & Ollitrault, P. (1998) Isozyme variation infive species of Passiflora subgenus Tacsonia and P. manicata. P Inteamer Soc Trop Hortic 42:260–266spa
dc.relation.referencesSegura, S., d’Eeckenbrugge, G., Bohorquez, A., Ollitrault, P., & Tohme, J. (2002) An AFLP diversity study of the genus Passiflora focusing on subgenus Tacsonia. Genet Resour Crop Evol 49:111–123spa
dc.relation.referencesSegura, S., Coppens-D’eeckembrugge, G., López, L., Grum, M., & Guarino, L. (2003). Mapping the potential distribution of five species of Passifora in Andean countries. Gen. Res. Crop Evol. 50: 555-566spa
dc.relation.referencesSegura, S., d’Eeckenbrugge, G., Ocampo, C., & Ollitrault P (2005) Isozyme variation in Passiflora subgenus Tacsonia: geographic and interspecific differentiation among the three most common species. Genet Resour Crop Evol 52:455–463spa
dc.relation.referencesSeverin, C., Bueno, M., Santín, F., & Giubileo, G. (2011). In vitro response of different biotypes and explants of Passiflora caerulea L. In Rev. Colomb. Biotecnol (Vol. 1).spa
dc.relation.referencesSeverin, C., Salinas, A., Gattusso, S., Gattusso, M., Busilacchi, H., Giubileo, G., & Aguirre, A. (2004). Estimulación de la germinación de semillas de Passiflora caerulea cultivadas in vitro. Revista de la Facultad de Ciencias Agrarias. UNR, 4 (VI): 55-58.spa
dc.relation.referencesSilva, J., Campos, A., Ferreira, L., Aranha, J., Thiede, A., Zago, F., Bertoli, L., Ferreira, M., Trubian, P., & Freitas, A. (2006) Extract of Passiflora edulis in the healing process of gastric sutures in rats: a morphological and tensiometric study. Acta Cir Bras 21(Suppl 2):52–60spa
dc.relation.referencesSilva, T., Gomes, H., & Scherwinski-Pereira, J. (2017) Designing ex-situ conservation strategies for seeds storage of Piper aduncum and P. hispidinervum through cryopreservation and low-temperature techniques. J for Res 22:380–385. https://doi.org/10.1080/13416979.2017.1381494spa
dc.relation.referencesSnow, A. (1982) Pollination intensity and potential seed set in Passiflora vitifolia. Oecologia 55: 231-237.spa
dc.relation.referencesSnow, N., & MacDougal, J. (1993). New chromosome reports in Passiflora (Passifloraceae). Syst. Botany 18(2), 261-273. Doi: 10.2307/2419402spa
dc.relation.referencesTaylor Son, R. & Hendricks S. (1976) Dormancy in Seeds. Ann Rev. Plan. Physiology. 28. 331-354.spa
dc.relation.referencesThorpe, T. (1980). Organogénesis in vitro: Structural, physiological and biochemical aspects. Nueva York.: International Review of Cytology, Supplement 1 1 A. Academic Pressspa
dc.relation.referencesTillett, S. (1988). Passionis passifloris II. Terminología. Ernstia 48: 1–40.spa
dc.relation.referencesTorres, G. (2018). Latencia y germinación de semillas de dos especies cultivadas de Passifloraceae. Bol. Cient. Mus. Hist. Nat. U. Caldas. 22(1): 15-27, DOI: 10.17151/bccm.2018.22.1.1spa
dc.relation.referencesUICN. (2003). Directrices para emplear los criterios de la Lista Roja de la UICN a nivel regional: Versión 3.0. Comisión de Supervivencia de Especies de la UICN. UICN, Gland, Suiza y Cambridge, Reino Unido.spa
dc.relation.referencesUICN. (2017). Directrices para emplear los criterios de la Lista Roja de la UICN a nivel regional: Versión 3.0. Comisión de Supervivencia de Especies de la UICN. UICN, Gland, Suiza y Cambridge, Reino Unido.spa
dc.relation.referencesUlmer, T., & MacDougal, J. (2004). Passiflora: Passion flowers of the world, Timber Press, Inc. 430pp.spa
dc.relation.referencesUribe, L. (1955). Pasifloráceas y Begoniáceas de la Real Expedición Botánica del Nuevo Reino de Granada. Ediciones Cultura Hispánica. Madrid 26: 1-98.spa
dc.relation.referencesValencia, R., Lobo, M., & Adolfo Ligarreto, G. (2010). State of Research of Plant Genetic Resources in Colombia: Germplasm Banks System.spa
dc.relation.referencesVarassin, I., Trigo J., & Sazima, M. (2001). The role of nectar production, flower pigments and odour in the pollination of four species of Passiflora (Passifloraceae) in south eastern Brazil. Botanical Journal of the Linnean Society 136: 139–152.spa
dc.relation.referencesVasconcellos, M. (1991). Biología floral do maracujá doce Passiflora alata Dryan nas condiçöes de Botucatu-SP. Tesis Faculdade de Ciencias Agrarias.spa
dc.relation.referencesVega, E., Campos, V., Monge, A., Bertsch, S., & Vargas, E. (2022). Morphology and viability test optimization in seeds of Passiflora spp. from Costa Rica. Agronomia Mesoamericana, 33. https://doi.org/10.15517/am.v33iEspecial.51567spa
dc.relation.referencesVeiga, L., Mira, S., González, M., Souza, M., Meletti, L., & Pérez, F. (2013). Seed germination, desiccation tolerance and cryopreservation of Passiflora species. In Seed Sci. & Technol (Vol. 41).spa
dc.relation.referencesVelásquez J., Melgarejo L., & Stanislav M. (2012). Tratamientos pregerminativos en semillas de Gulupa Passiflora edulis Sims. En: Melgarejo LM (Ed) Ecofisiología del cultivo de la gulupa (Passiflora edulis Sims). Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. p: 84-89.spa
dc.relation.referencesVilain, Y. (2011). Benefecits of the Passion fruit. Passiflora on line 34-36.spa
dc.relation.referencesVieira M & Carneiro M. (2004) Passiflora ssp. Passion fruit. In: Litz RE (ed) Biotechnology of fruits and nuts crops. CABI, Wallingford, Oxon, UK, pp 436–453spa
dc.relation.referencesVieira, L., Rocha, D., Taquetti, M., da Silva, L., de Campos, J., Viccini, L., & Otoni, W. (2014). In vitro plant regeneration of Passiflora setacea D.C. (Passifloraceae): the influence of explant type, growth regulators, and incubation conditions. In Vitro Cellular and Developmental Biology - Plant, 50(6), 738–745. https://doi.org/10.1007/s11627-014-9650-0spa
dc.relation.referencesVillalobos, V., & Thorpe, T. (1991). Micropropagación: Conceptos, metodología y resultados.err Cali, Colombia: Biblioteca Jardin Botanico José Celestino Mutis.spa
dc.relation.referencesWaterworth, W., Bray, C., & West, C. (2015). The importance of safeguarding genome integrity in germination and seed longevity. Journal of Experimental Botany, 66(12), 3549–3558. https://doi.org/10.1093/jxb/erv080spa
dc.relation.referencesYockteng, R., G. Coppens d’Eeckenbrugge & T. Souza Chies. (2011). Passiflora L. pp. 129-171. En: Chittaranjan, K. (ed.). Wild crop relatives: Genomic and breeding resources. tropical and subtropical fruits. Springer Verlag, Berlinspa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.rights.licenseReconocimiento 4.0 Internacionalspa
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/spa
dc.subject.agrovocPassifloraceae
dc.subject.agrovocTamaño de la semilla
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dc.subject.agrovocCaracterísticas de semillas
dc.subject.agrovocSeed characteristics
dc.subject.agrovocSemillas
dc.subject.agrovocSeed
dc.subject.agrovocGerminación de las semillas
dc.subject.agrovocSeed germination
dc.subject.agrovocIn vitro
dc.subject.proposalConservaciónspa
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dc.subject.proposalCultivo de tejidosspa
dc.titleMorfología, viabilidad y germinación in vitro en semillas de especies de Passiflora L. distribuidas en Colombiaspa
dc.title.translatedMorphology, viability and in vitro germination in seeds of two species of Passiflora L. distributed in Colombiaeng
dc.typeTrabajo de grado - Maestríaspa
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dcterms.audience.professionaldevelopmentInvestigadoresspa
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