Comparación de la especificidad y capacidad neutralizante de dos antivenenos antiofídicos retados con veneno de serpiente del género Bothrops de Colombia

dc.contributor.advisorCastiblanco Rodríguez, Ana Lucíaspa
dc.contributor.authorSarmiento Acuña, Karen Solanyispa
dc.contributor.researchgroupToxicología Ambiental y Ocupacional - TOXICAOspa
dc.date.accessioned2020-06-01T21:53:24Zspa
dc.date.available2020-06-01T21:53:24Zspa
dc.date.issued2020-05-29spa
dc.description.abstractIntroduction. In Colombia the antivenom against snakebite from the National Institute of Heatlh (INS) and the antivenom from the Bioclon Intitute, belonging to Laboratorios Silane of Mexico, Antivipmyn-Tri (AVP-T), but neither includes venom of Bothrops rhombeatus species for their production. Objective. The aim of this research was to evaluate the neutralizing capacity, specificity and affinity of INS and AVP-T antivenoms with B. rhombeatus venom, using the Bothrops asper and Bothrops atrox venom as a reference and control for the experiments. Methods. The research was carried out in the Instrumental Analysis Laboratory of the Institute of Biotechnology of the Universidad Nacional de Colombia, and in the Toxins Analysis Laboratory of the Institute of Biotechnology of the Universidad Nacional Autónoma de México. The test in mice were analyzed with albinos Mus musculus CD1 weighing between 18-20 g intraperitoneally (IP). Venom proteins and antivenoms were quantified by Absorbance 280 nm, Bradford method and Bicinchoninic acid (BCA). Polyacrylamide gel electrophoresis was performed in the presence of sodium duodecyl sulfate (SDS-PAGE) and reverse phase high performance liquid chromatography (RP-HPLC) to analyze the protein profile. The mean lethal dose (LD50) of the venom and the mean effective dose (ED50) of the antivenoms were calculate. The immunochemical specificity and affinity of the antivenoms for the venom were evaluated with affinity chromatography, Western Blot, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), and SDS-PAGE of the fractions coupled to each antivenoms. Results. The B. rhombeatus´s LD50 was 6,6 mg/kg, of B. asper was 6,4 mg/kg and of B. atrox was 6,7 mg/kg. The INS´s ED50 was 119,7 g/3LD50 and AVP-T´s ED50 was 270 g/3LD50 with B rhombeatus venom. Compared with B. asper venom, the INS´s ED50 was 62,74 g/3LD50 and AVP-T´s ED50 was 143,8 g/3LD50, and with B atrox venom the INS´s ED50 was 75,15 g/3LD50 and AVP-T´s ED50 was 190,2 g/3LD50. The electrophoretic profile and the chromatogram fractions of the venom was correlated, suggesting phospholipases A2 (PLA2), metalloproteinases (svMP) type I, II, III and serinoproteases (SP) in B. rhombeatus venom. Similarities of high, medium and low molecular weight protein were found between the profile of the three venoms with bands between 50-70 KDa corresponding to svMP III, band around 20-25 KDa of svMP I and between 11-15 KDa of PLA2. Both antivenoms showed immunochemical recognition towards PLA2 and svMP but at different intensity. INS showed recognition to svMP III fractions of B. atrox venom, same as towards svMP I and III of B. rhombeatus venom and svMP I, II and III fractions of the B. asper venom. Unlike INS, AVP-T showed immunochemical recognition to SP of B. rhombeatus venom and almost all the svMP fractions of B. asper venom, with higher intensity to svMP III and PLA2 of B. atrox venom. The quantification of antibodies coupled was for INS to B. rhombeatus was 94,2% and to B. asper venom was 92,7%; while AVP-T had 90,4% coupling to B rhombeatus and 96,6% to B. asper venom. These results are consistent with the ED50, because both antivenoms were effective to neutralize the lethality of the B. rhombeatus venom, however, considering neither was developed with this venom, thus inferring cross-reactivity towards PLA2 and svMP. All the above, were corroborated with the recognition level of the ELISA test, which it is evident that more INS antivenom was required to reach half of the maximum response with the B. rhombeatus venom compared to AVP-T. Conclusion. The results obtained suggest that both antivenoms may be a therapeutic option to the treatment of snakebite caused by B. rhombeatus, however, beyond that there is the fact is necessary to improve the specificity of commercial antivenoms, so that they are more related to the venom´s fractions with a significant effect on the pathophysiology of the patient, which would allow ophidiotoxicosis to be more easily neutralized without requiring a large amount of antivenoms and reducing secondary reactions to excess heterologous plasma immunoglobulins.spa
dc.description.abstractIntroducción. En Colombia se comercializa el antiveneno antiofídico polivalente del Instituto Nacional de Salud (INS) y el antiveneno del Instituto Bioclon, perteneciente a Laboratorios Silanes de México, denominado Antivipmyn-Tri (AVP-T), siendo relevante que ninguno incluye para su elaboración el veneno de la especie Bothrops rhombeatus. Objetivo. El objetivo de esta investigación fue evaluar la capacidad neutralizante, especificidad y afinidad de los antivenenos INS y AVP-T al veneno de Bothrops rhombeatus, utilizando como referente y control para los experimentos el veneno de Bothrops asper y de Bothrops atrox. Métodos. La investigación se desarrolló en el Laboratorio de Análisis Instrumental del Instituto de Biotecnología perteneciente a la Universidad Nacional de Colombia y en Laboratorio de Análisis de Toxinas del Instituto de Biotecnología, de la Universidad Nacional Autónoma de México. Los ensayos con murinos se realizaron con ratones albinos Mus musculus CD1 con peso entre 18-20 g, por vía intraperitoneal (IP). Se cuantificaron las proteínas del veneno y los antivenenos por Absorbancia a 280 nm, método de Bradford y Ácido Bicinconínico (BCA). Se realizó electroforesis en gel de poliacrilamida en presencia de Duodecilsulfato de Sodio (SDS-PAGE) y cromatografía líquida de alta resolución en fase reversa (RP-HPLC) para analizar el perfil proteico. Se calculó la Dosis Letal Media (DL50) del veneno y la Dosis Efectiva Media (DE50) de los antivenenos. Se evaluó la especificidad y afinidad inmunoquímica de los antivenenos hacia el veneno con cromatografía de afinidad, Western Blot, ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA) y SDS-PAGE de las fracciones acopladas a cada uno de los antivenenos. Resultados. Dentro de los resultados se encontró una DL50 para el veneno de B. rhombeatus de 6.6 mg/kg, para B. asper fue de 6.4 mg/kg y para B atrox de 6.7 mg/kg. La DE50 para INS fue de 119.7 g/3DL50 y para AVP-T de 270.2 g/3DL50 con el veneno de B. rhombeatus. Comparado con el veneno de B asper la DE50 para INS fue de 62,74 g/3DL50, para AVP-T de 143,8 g/3DL50, mientras que con el veneno de B atrox DE50 para INS fue de 75,15 g/3DL50 y para AVP-T de 190,2 g/3DL50. Se correlacionó el perfil electroforético y las fracciones del cromatograma del veneno sugiriendo en el veneno de B. rhombeatus la presencia de fosfolipasas A2 (PLA2), Metaloproteinasas (svMP) tipo I, II y III y serinoproteasas (SP). Se encontraron similitudes entre los perfiles de los venenos de B. rhombeatus, B. asper y B. atrox, de los componentes proteicos de alto, medio y bajo peso molecular con bandas entre 50-70 KDa correspondientes a svMP III, bandas alrededor de 20-25 KDa de svMP I y bandas entre 11-15 KDa de PLA2. Se encontró que ambos antivenenos mostraron reconocimiento inmunoquímico hacia PLA2 y svMP pero en diferente intensidad. El antiveneno INS mostró reconocimiento de las fracciones de svMP III del veneno de B atrox; al igual que hacia svMP I y III del veneno de B. rhombeatus y las fracciones svMP I, II y III del veneno de B. asper. A diferencia del INS, AVP-T si presentó reconocimiento inmunoquímico a SP del veneno de B. rhombeatus y a casi todas las fracciones de svMP del veneno de B asper, mostrando mayor intensidad a svMP III y PLA2 del veneno de B atrox. La cuantificación de anticuerpos específicos del INS acoplados al veneno de B. rhombeatus fue de 94,2%; hacia el veneno de B. asper fue de de 92,7%; mientras que AVP-T tuvo un acoplamiento del 90,4% hacia B. rhombeatus y de 96,6% al veneno de B asper. Estos datos son concordantes con la capacidad neutralizante, donde AVP-T fue tan eficaz como INS para neutralizar la letalidad del veneno de B. rhombeatus, sin embargo, cabe resaltar que ninguno fue desarrollado con este veneno, por lo que se infiere una reactividad cruzada hacia PLA2 y svMP. Todo lo anterior fue corroborado con el nivel de reconocimiento de la prueba ELISA, donde se evidenció que se requirió más antiveneno INS para alcanzar la mitad de la respuesta máxima con el veneno de B. rhombeatus comparado con AVP-T. Conclusiones. Los resultados obtenidos sugieren que ambos antivenenos pueden ser una opción terapéutica para tratar los envenenamientos causados por esta especie, sin embargo, más allá, está el hecho de comprender que es necesario mejorar la especificidad de los antivenenos comerciales, para que sean más afines a las fracciones de los venenos con efecto significativo en la fisiopatología del paciente, lo que permitiría neutralizar más fácilmente la ofidiotoxicosis sin requerir una gran cantidad de antiveneno y disminuir las reacciones secundarias al exceso de inmunoglobulinas heterólogas en plasma.spa
dc.description.degreelevelMaestríaspa
dc.description.sponsorshipLaboratorio de Análisis instrumental, Instituto de Biotecnología de la Universidad Nacional de Colombia; Laboratorio de Análisis de Toxinas animales, Instituto de Biotecnología de la Universidad Nacional Autónoma de México; Departamento de Ciencias Fisiológicas, Facultad de Medicina, Pontificia Universidad Javeriana; Fundación Zoológica de Cali.spa
dc.format.extent128spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.urihttps://repositorio.unal.edu.co/handle/unal/77587
dc.language.isospaspa
dc.publisher.branchUniversidad Nacional de Colombia - Sede Bogotáspa
dc.publisher.programBogotá - Medicina - Maestría en Toxicologíaspa
dc.relation.references1. Minambiente. Programa nacional para la conservación de serpientes en colombia [Internet]. Corantioqu. Colombia. U nacional de, editor. Bogota; 2013. 1-77 p. Available from: https://www.researchgate.net/publication/259648313spa
dc.relation.references2. Gutiérrez JM. Comprendiendo los venenos de serpientes: 50 Años de investigaciones en América Latina. Revista de Biologia Tropical. 2002;50(2):377–94.spa
dc.relation.references3. Saravia, P., Rojas, E., Arce, V., Guevara, C., López, J.C., Chaves, E., Velásquez, R., Rojas, G., Gutiérrez JMG. Geographic and ontogenic variability in the venom of the neotropical rattlesnake Crotalus durissus: Pathophysiological and therapeutic implications. Revista de Biologia Tropical. 2002;50(1):14.spa
dc.relation.references4. Pereañez JA, Camilo-Patiño A, Henao-Castañeda IC. Toxinas provenientes de venenos de serpiente: blancos terapéuticos, herramientas en investigación biomédica y agentes con potencial terapéutico. Curare. 2014;1(1):49–60.spa
dc.relation.references5. Murillo, J. Prada E. Estudio químico y de toxicidad del veneno de serpientes de la familia viperidae Bothrops atrox mantenidas en cautiverio en el serpentario de la universidad de la amazonia. Universidad de la Amazonía; 2009.spa
dc.relation.references6. Otero R, Gutiérrez J, Beatriz Mesa M, Duque E, Rodríguez O, Luis Arango J, et al. Complications of Bothrops, Porthidium, and Bothriechis snakebites in Colombia. A clinical and epidemiological study of 39 cases attended in a university hospital. Toxicon. 2002;40(8):1107–14.spa
dc.relation.references7. Karaye KM, Mijinyawa MS, Yakasai AM, Kwaghe V, Joseph GA, Iliyasu G, et al. Cardiac and hemodynamic features following snakebite in Nigeria. Vol. 156, International journal of cardiology. 2012. p. 326–8.spa
dc.relation.references8. Silveira de Oliveira J, Rossan de Brandão Prieto da Silva A, Soares MB, Stephano M a, de Oliveira Dias W, Raw I, et al. Cloning and characterization of an alpha-neurotoxin-type protein specific for the coral snake Micrurus corallinus. Biochemical and biophysical research communications. 2000;267:887–91.spa
dc.relation.references9. Guerrero, J. Benard-Valle, M. Restano, R. Corzo F, Alagón, A. Olvera A. Cloning and sequencing of three- fi nger toxins from the venom glands of four Micrurus species from Mexico and heterologous expression of an alpha-neurotoxin from Micrurus diastema. Biochimie. 2018;147:114–21.spa
dc.relation.references10. Rey-Suarez P, Nunez V, Saldarriaga-Cordoba M, Lomonte B. Primary structures and partial toxicological characterization of two phospholipases A2 from Micrurus mipartitus and Micrurus dumerilii coral snake venoms. Biochimie. 2017 Jun;137:88–98.spa
dc.relation.references11. Instituto Nacional de Salud. Protocolo de Vigilancia en Salud Pública. Accidente Ofídico [Internet]. Instituto Nacional de Salud INS. 2014. Available from: http://www.ins.gov.co/lineas-de-accion/Subdireccion-vigilancia/sivigila/Protocolos SIVIGILA/PRO Accidente Ofidico.pdfspa
dc.relation.references12. Instituto Nacional de Salud. Boletin Epidemiológico Accidente ofídico 2019. 2019spa
dc.relation.references13. Herrera C, Macêdo JKA, Feoli A, Escalante T, Rucavado A, Gutiérrez JM, et al. Muscle Tissue Damage Induced by the Venom of Bothrops asper: Identification of Early and Late Pathological Events through Proteomic Analysis. PLoS Neglected Tropical Diseases. 2016;10(4):1–22.spa
dc.relation.references14. Laines J, Segura Á, Villalta M, Herrera M, Vargas M, Alvarez G, et al. Toxicity of Bothrops sp snake venoms from Ecuador and preclinical assessment of the neutralizing efficacy of a polyspecific antivenom from Costa Rica. Toxicon. 2014;88:34–7.spa
dc.relation.references15. Mora-Obando D, Guerrero-Vargas JA, Prieto-Sánchez R, Beltrán J, Rucavado A, Sasa M, et al. Proteomic and functional profiling of the venom of Bothrops ayerbei from Cauca, Colombia, reveals striking interspecific variation with Bothrops asper venom. Journal of Proteomics [Internet]. 2014;96:159–72. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.jprot.2013.11.005spa
dc.relation.references16. Folleco AJF. Taxonomía del complejo Bothrops asper (Serpientes Viperidae) en el sudoeste de Colombia. Revalidación de la especie Bothrops rhombeatus (García, 1896) y descripción de una nueva especie. Revista Novedades Colombianas. 2010:33–70.spa
dc.relation.references17. Avila, A. Cortés, J. Moreno A. Toxicología en urgencias. primera. CELSUS, editor. Bogotá, Colombia; 2015. 595 p.spa
dc.relation.references18. Instituto Nacional de Salud. Inserto Suero Antiofídico Polivalente VI:06 [Internet]. Vol. 06. 2017. Available from: www.ins.gov.cospa
dc.relation.references19. Ministerio de salud y protección social. Decreto 386 de 2018. 2018.spa
dc.relation.references20. Instituto Nacional de Salud. Circular 3-0870. 2010.spa
dc.relation.references21. Bioclon. Faboterápico polivalente antiofídico Antivipmyn [Internet]. Mexico; 2017. p. 4. Available from: http://consultaregistro.invima.gov.co:8082/Consultas/consultas/consreg_encabcum.jspspa
dc.relation.references22. Chippaux JP, Goyffon M. Venoms, antivenoms and immunotherapy. Toxicon. 1998;36(6):823–46.spa
dc.relation.references23. Pardal P, Medeiro S, Al E. Clinical trial of two antivenoms for the treatment of Bothrops and Lachesis bites in the north eastern Amazon region of Brazil. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. 2004;98(1):28–42.spa
dc.relation.references24. Gutiérrez JM, León G, Burnouf T. Antivenoms for the treatment of snakebite envenomings: The road ahead. Biologicals [Internet]. 2011;39(3):129–42. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.biologicals.2011.02.005spa
dc.relation.references25. Vargas M, Segura Á, Villalta M, Herrera M, Gutiérrez JM, León G. Purification of equine whole IgG snake antivenom by using an aqueous two phase system as a primary purification step. Biologicals. 2015;43(1):37–46.spa
dc.relation.references26. Krifi MN, El Ayeb M, Dellagi K. The improvement and standardization of antivenom production in developing countries: comparing antivenom quality, therapeutical efficiency, and cost [Internet]. Vol. 5, Journal of Venomous Animals and Toxins. 1999. p. 128–41. Available from: http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0104-79301999000200002&lng=en&nrm=iso&tlng=enspa
dc.relation.references27. Vázquez H, Olvera F, Alagón A, Sevcik C. Production of anti-horse antibodies induced by IgG, F(ab’)2and Fab applied repeatedly to rabbits. Effect on antivenom pharmacokinetics. Toxicon [Internet]. 2013;76:362–9. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.toxicon.2013.09.004spa
dc.relation.references28. World Health Organization WHO. Guidelines for the Management of snakebites. 2nd ed. 2017. 208 p.spa
dc.relation.references29. Instituto Nacional de Salud. Accidentes ofídicos por Micrurus, Colombia, 2011, una mirada desde la salud pública. In: Informe Quincenal Epidemiológico Nacional. 2012. p. 12spa
dc.relation.references30. Otero-Patiño R. Snake Bites in Colombia. Springer Science+Business Media B.V., part of Springer Nature 2018 https://doi.org/10.1007/978-94-017-7438-3_41; 2018. 3-50 p.spa
dc.relation.references31. Campbell, JA; Lamar W. The Venomous Reptiles of the Western Hemisphere. Two-Volume. Comstock Publishing Associates, editor. Ithaca (NY): Cornell University Press; 2004. 528 p.spa
dc.relation.references32. Salazar-Valenzuela D, Mora-Obando D, Fernández ML, Loaiza-Lange A, Gibbs HL, Lomonte B. Proteomic and toxicological profiling of the venom of Bothrocophias campbelli, a pitviper species from Ecuador and Colombia. Toxicon. 2014;90:15–25.spa
dc.relation.references33. Castri-Herrera, F. Vargas -Salinas F. Anfibios y reptiles en el departamento del valle del cauca, Colombia. Biota Colombiana. 2008;9(2):251–77.spa
dc.relation.references34. Guerrero-Vargas J, Coral-Plaza E, Rivas-Pava M, Meneses-Mosquera A, Ayerbe-Gonzáles S. Catálogo de los anfibios de la Colección de Referencia del Museo de Historia Natural de la Universidad del Cauca. Universidad del Cauca; 2007. 35 p.spa
dc.relation.references35. León Núñez, L. Rojas A. Informe Del Evento Accidente Ofídico Hasta El Periodo Epidemiológico XIII Colombia, 2017 [Internet]. Instituto Nacional de Salud INS. 2017. Available from: https://www.ins.gov.co/buscador-eventos/Informesdeevento/ACCIDENTE OFÍDICO 2017.pdfspa
dc.relation.references36. Scovino S. Comparación del perfil proteico de venenos de serpientes de los géneros Bothrops, Bothrocophias y Crotalus provenientes del valle del cauca colombia (Fundación Zoológico de Cali) mediante el uso de cromatografía liquida de alta eficiencia HPLC y electrofo [Internet]. Vol. 53, Universidad El Bosque. 2017. Available from: https://bosq.ent.sirsi.net/client/es_ES/default/search/results?qu=&te=&ir=Bothspa
dc.relation.references37. Patiño AC, Pereañez JA, Gutiérrez JM, Rucavado A. Biochemical and biological characterization of two serine proteinases from Colombian Crotalus durissus cumanensis snake venom. Toxicon. 2013;63:32–43.spa
dc.relation.references38. Ayerbe S, Guerrero-vargas JA. Catálogo de Reptiles Museo de Historia Natural Unicauca 2007. Universida. Natural M de H, editor. Popayán; 2007. 85 p.spa
dc.relation.references39. Theakston RDG, Lalloo DG. Venomous Bites and Stings. Principles and Practice of Travel Medicine: Second Edition [Internet]. 2013;26(2):415–33. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.idc.2012.03.006spa
dc.relation.references40. Ortiz C, Lazo F, Bellido C, Gonzales E, Yarlequé A. Variaciones en las actividades enzimáticas del veneno de la serpiente Bothrops atrox “Jergón”, de tres zonas geográficas del Perú. Revista Peruana de Medicina Experimental y Salud Publica. 2012;29(2):198–205.spa
dc.relation.references41. Calvete JJ. Snake venomics: From the inventory of toxins to biology. Toxicon. 2013;75:44–62.spa
dc.relation.references42. Benemérita Universidad Autónoma de Puebla. Estrategias y Avances en el Estudio de Toxinas de Interés para la Biomedicina. Fabiola Pa. 2015. 258 p.spa
dc.relation.references43. Sanhajariya S, Duffull SB, Isbister GK. Pharmacokinetics of Snake Venom. Toxins. 2018;10(73):https://www.mdpi.com/2072-6651/10/2/73.spa
dc.relation.references44. Niño R. Análisis comparativo del contenido proteico de venenos de serpientes de la familia Viperidae de diferentes regiones de Colombia mediante el empleo de cromatografía líquida y electroforesis [Internet]. Universidad Nacional de Colombia; 2018. Available from: http://bdigital.unal.edu.co/63962/1/Rosamery Niño P.52173513.pdfspa
dc.relation.references45. Angulo Y, Lomonte B. Biochemistry and toxicology of toxins purified from the venom of the snake Bothrops asper. Toxicon [Internet]. 2009;54(7):949–57. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.toxicon.2008.12.014spa
dc.relation.references46. Fernández J, Gutiérrez JM, Angulo Y, Sanz L, Juárez P, Calvete JJ, et al. Isolation of an acidic phospholipase A2 from the venom of the snake Bothrops asper of Costa Rica: Biochemical and toxicological characterization. Biochimie. 2010;92(3):273–83.spa
dc.relation.references47. Lomonte B. Manual de métodos Inmunológicos [Internet]. cuarta. Costa Rica: Universidad de Costa Rica; 2007. 135 p. Available from: http://www.kerwa.ucr.ac.cr/bitstream/handle/10669/9244/2007_Manual_Metodos_Inmunologicos_completo_web.pdf?sequence=1&isAllowed=yspa
dc.relation.references48. Alape-giron A, Sanz L, Flores-dı M, Madrigal M, Sasa M, Calvete JJ, et al. Snake Venomics of the Lancehead Pitviper Bothrops asper: Geographic, Individual, and Ontogenetic Variations. Journal of Proteome Research. 2008;7:3556–71.spa
dc.relation.references49. Mora, J. Mora, R. Lomonte, B. Gutiérrez J. Effects of Bothrops asper snake venom on lymphatic vessels: insights into a hidden aspect of envenomation. PLoS neglected tropical diseases. 2008;2(10):e318–e318spa
dc.relation.references50. Vergara I, Castillo EY, Romero-piña ME, Torres-viquez I, Paniagua D, Boyer L V, et al. Biodistribution and Lymphatic Tracking of the Main Neurotoxin of Micrurus fulvius Venom by Molecular Imaging. Toxins. 2016;8(85).spa
dc.relation.references51. Fernández-Culma M, Pereañez JA, Núñez-Rangel V, Lomonte B. Snake venomics of Bothrops punctatus, a semi-arboreal pitviper species from Antioquia, Colombia. PeerJ. 2014;246:1–16.spa
dc.relation.references52. Gutiérrez JM, Escalante T, Rucavado A. Experimental pathophysiology of systemic alterations induced by Bothrops asper snake venom. Toxicon. 2009;54:976–87.spa
dc.relation.references53. WHO. Technical Report Series No. 1004, 2017. Anexo 5 Guidelines of the Production, Control and Regulation of Snake Antivenom Immunoglubulins. In: Guidelines for the production, control and regulation of snake antivenom immunoglobulins [Internet]. 2017. p. 388. Available from: https://www.who.int/bloodproducts/AntivenomGLrevWHO_TRS_1004_web_Annex_5.pdfspa
dc.relation.references54. Johnson M. Cuantificación de proteínas [Internet]. Obtenido de Labome: http://www.labome.es/method/Protein-Quantitation.html. 2012. p. 1–13 Revisado: 30 de enero de 2020. Available from: http://www.labome.es/method/Protein-Quantitation.htmlspa
dc.relation.references55. Lemus, M. Cortez L. Bioquímica General: Fundamentos y análisis de laboratorio. Universidad Técnica de Machala, editor. Utmach. 2015. 82 p.spa
dc.relation.references56. Ausubel FM, Brent R, Kingston RE, Moore DD, Seidman JG, Smith JA, et al. Current Protocols in Molecular Biology. John Wiley & Sons, Inc. All rights reserved. John. 2003. 4648 p.spa
dc.relation.references57. Lomonte B. Electroforesis en Gel de Poliacrilamida. Inmunología General: Manual de Laboratorio [Internet]. 2007;90–9. Available from: http://www.ciens.ucv.ve:8080/generador/sites/lab-bioq-gen/archivos/Lomonte - Cap13 PAGE.pdfspa
dc.relation.references58. Universidad Nacional Autónoma de México. Técnicas Cromatográficas. Quimica Analitica Instrumental II. 2007. 1-123 p.spa
dc.relation.references59. Esquivel E, Leal L. Cromatografía de fase reversa. Métodos Fisicoquímicos en Biotecnología. UNAM. 2004. 1-50 p.spa
dc.relation.references60. Hernández S. El modelo animal en las investigaciones biomédicas. Biomedicina [Internet]. 2006;2(3):252–6. Available from: http://www.um.edu.uy/docs/revistabiomedicina/2-3/modelo.pdfspa
dc.relation.references61. Sells PG. Animal experimentation in snake venom research and in vitro alternatives. Toxicon. 2003;42(2):115–33.spa
dc.relation.references62. Instituto de Biotecnología UNAM. Inmunología. Universidad Nacional Autónoma de México, editor. 2007. 60 p.spa
dc.relation.references63. World Health Organization. Guidelines for the production, control and regulation of snake antivenom immunoglobulins. World Health Organization (WHO) [Internet]. 2017;204(1):87–91. Available from: http://www.biologie-journal.org/10.1051/jbio/2009043%5Cnhttp://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20950580spa
dc.relation.references64. Sarmiento K, Torres I, Ríos C, Salazar J, Baracaldo A, Zambrano J, et al. Comparison of Neutralization of Two Experimental Monovalent Antivenoms of Colombia ’ s Bothrops asper from Different Localities. Journal of Pharmacology and Toxicology. 2019;15(1):8–15.spa
dc.relation.references65. Rojas E, Quesada L, Arce V, Lomonte B, Rojas G, Gutiérrez JM. Neutralization of four Peruvian Bothrops sp. snake venoms by polyvalent antivenoms produced in Perú and Costa Rica: Preclinical assessment. Acta Tropica. 2005;93(1):85–95.spa
dc.relation.references66. Otero-patiño, R; Silva-haad, J; Barona M et al. Accidente bothrópico en Colombia: estudio multicéntrico de la eficacia seguridad de Antivipmyn-Tri®, un antiveneno polivalente producido en México. Iatreia [Internet]. 2007;20(3):244–62. Available from: http://www.scielo.org.co/pdf/iat/v20n3/v20n3a02.pdfspa
dc.relation.references67. Casewell NR, Cook DAN, Wagstaff SC, Nasidi A, Durfa N, Wuster W, et al. Pre-clinical assays predict pan-African Echis viper efficacy for a species-specific antivenom. PLoS neglected tropical diseases. 2010 Oct;4(10):e851–e851.spa
dc.relation.references68. Ainsworth S, AU - Slagboom J, AU - Alomran N, AU - Pla D, AU - Alhamdi Y, AU - King SI, et al. The paraspecific neutralisation of snake venom induced coagulopathy by antivenoms. Communications Biology [Internet]. 2018;34(1):1–14. Available from: http://dx.doi.org/10.1038/s42003-018-0039-1spa
dc.relation.references69. Segura A, Castillo MC, Núñez V, Yarlequé A, Gonçalves LRC, Villalta M, et al. Preclinical assessment of the neutralizing capacity of antivenoms produced in six Latin American countries against medically-relevant Bothrops snake venoms. Toxicon [Internet]. 2010;56(6):980–9. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.toxicon.2010.07.001spa
dc.relation.references70. Otero R, León G, Gutiérrez JM, Rojas G, Toro MF, Barona J, et al. Efficacy and safety of two whole IgG polyvalent antivenoms, refined by caprylic acid fractionation with or without β-propiolactone, in the treatment of Bothrops asper bites in Colombia. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. 2006;100(12):1173–82.spa
dc.relation.references71. Sarmiento, Karen. Rodríguez A, Quevedo-buitrago W, Hidalgo-martínez P, Díez H. Comparación de la eficacia , la seguridad y la farmacocinética de los antivenenos antiofídicos : revisión de literatura. Universitas Médica. 2020;61(1):22.spa
dc.relation.references72. Seifert SA, Boyer L V. Recurrence phenomena after immunoglobulin therapy for snake envenomations: Part 1. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of immunoglobulin antivenoms and related antibodies. Annals of Emergency Medicine. 2001;37(2):189–95.spa
dc.relation.references73. Gutierrez J, Leon G, Lomonte B, Angulo Y. Antivenoms for Snakebite Envenomings. Inflammation & Allergy - Drug Targets [Internet]. 2011;10(5):369–80. Available from: http://www.eurekaselect.com/openurl/content.php?genre=article&issn=1871-5281&volume=10&issue=5&spage=369spa
dc.relation.references74. Davinia, Pla. Rodriguez Y, Juan C. Third Generation Antivenomics : Pushing the Limits of the In Vitro Preclinical Assessment of Antivenoms. Toxins. 2017;9(168):12.spa
dc.relation.references75. Ministerio de salud y protección social. Resolución número 001209 del 2017. Ministerio de Protección Social, 001209 2017 p. 1–3.spa
dc.relation.references76. Instituto de Biotecnología. Laboratorio de analisis instrumental [Internet]. Universidad Nacional de Colombia. p. 1. Available from: http://www.hermes.unal.edu.co/pages/Consultas/EnsayoLaboratorio.xhtml?idEnsayo=452spa
dc.relation.references77. Instituto de biotecnología. Misión-visión Grupo del Dr. Alejandro Alagón [Internet]. UNAM. p. 1. Available from: http://www.ibt.unam.mx/server/PRG.base?tipo:doc,dir:PRG.grupo,par:Geu,tit:Grupo_del__Dr._Enrique_Rudi%F1ospa
dc.relation.references78. Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature medicine. 1970;227:680–5.spa
dc.relation.references79. INS. Producción y Venta de Antivenenos [Internet]. Minsalud. p. 1. Available from: https://www.ins.gov.co/Direcciones/Produccion/Paginas/Suero-antiofidico-polivalente.aspxspa
dc.relation.references80. Calderón A. Caracterización de la respueswta inmune humoral en caballos contra el veneno de Micrurus tener. Universidad Nacional Autónoma de México; 2011.spa
dc.relation.references81. Mahmood T, Yang PC. Western blot: Technique, theory, and trouble shooting. North American Journal of Medical Sciences. 2012;4(9):429–34.spa
dc.relation.references82. Neri E. Reconocimiento inmunoquímico de venenos de Viperidos norteamericanos por Antivipmyn y CroFab. Vol. 1, Universidad Autónoma del Estado de Morelos. 2010.spa
dc.relation.references83. Benard-Valle, M. Neri-Castro, E. Fry, BG. Boyer, L. Cochran, C. Alam, M. Jackson, T.N.W. Paniagua, D. Olvera, F. Koludarov, I. Sunagar, K. Alagon A. Antivenom Research and Development- Chapter 3. In: Venomous Reptiles and Their Toxins Pathophysiology and Biodiscovery. 2015. p. 61–72.spa
dc.relation.references84. Otero-patiño, R; silva-haad, J; barona, M; Toro M et al. Características bioquímicas y capacidad neutralizante de cuatro antivenenos polivalentes frente a los efectos farmacológicos y enzimáticos del veneno de Bothrops asper y Porthidium nasutum de Antioquia y Chocó. Iatreia [Internet]. 2002;15(1):5–15. Available from: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0121-07932002000100001spa
dc.relation.references85. Mora-Obando D, Guerrero-Vargas JA, Prieto-Sánchez R, Beltrán J, Rucavado A, Sasa M, et al. Proteomic and functional profiling of the venom of Bothrops ayerbei from Cauca, Colombia, reveals striking interspecific variation with Bothrops asper venom. Journal of Proteomics. 2014;96:159–72.spa
dc.relation.references86. Snakedatabase.org. LD50 of venomous snakes [Internet]. Botrhops asper - lethal doses. Available from: http://snakedatabase.org/pages/ld50.php#backToTopspa
dc.relation.references87. García PJ, Yarlequé A, Bonilla-ferreyra C, Pessah S, Vivas D, Sandoval GA, et al. Antiveneno Bothrópico liofilizado contra el veneno de la serpiente Bothrops atrox. 2008;25(4):386–91.spa
dc.relation.references88. Sánchez L V, Pla D, Herrera M, Chippaux JP, Calvete JJ, Gutiérrez JM. Evaluation of the preclinical efficacy of four antivenoms, distributed in sub-Saharan Africa, to neutralize the venom of the carpet viper, Echis ocellatus, from Mali, Cameroon, and Nigeria. Toxicon. 2015;106.spa
dc.relation.references89. Tanaka M, Suemaru K, Watanabe S, Cui R, Li B, Araki H. Comparison of short- and long-acting benzodiazepine-receptor agonists with different receptor selectivity on motor coordination and muscle relaxation following thiopental-induced anesthesia in mice. Journal of Pharmacological Sciences. 2008;107(3):277–84spa
dc.rightsDerechos reservados - Universidad Nacional de Colombiaspa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.rights.licenseAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacionalspa
dc.rights.spaAcceso abiertospa
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/spa
dc.subject.proposalBothrops rhombeatuseng
dc.subject.proposalBothrops rhombeatusspa
dc.subject.proposalBothrops asperspa
dc.subject.proposalBothrops aspereng
dc.subject.proposalAntivenomseng
dc.subject.proposalAntivenenos antiofídicosspa
dc.subject.proposalNational Institute of Healtheng
dc.subject.proposalInstituto Nacional de Saludspa
dc.subject.proposalInstituto Bioclónspa
dc.subject.proposalBioclón Instituteeng
dc.subject.proposalAntivipmyn-Trieng
dc.subject.proposalAntivipmyn-Trispa
dc.subject.proposalMordedura de serpientespa
dc.subject.proposalSnakebiteeng
dc.titleComparación de la especificidad y capacidad neutralizante de dos antivenenos antiofídicos retados con veneno de serpiente del género Bothrops de Colombiaspa
dc.typeTrabajo de grado - Maestríaspa
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_bdccspa
dc.type.coarversionhttp://purl.org/coar/version/c_ab4af688f83e57aaspa
dc.type.contentTextspa
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/masterThesisspa
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionspa
oaire.accessrightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2spa

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