Estudio de genómica comparativa para la identificación de biomarcadores con actividad probiótica en el género bacteriano Lactobacillus spp

dc.contributor.advisorIsaza Agudelo, Juan Pablo
dc.contributor.advisorMontoya Campuzano, Olga Ines
dc.contributor.authorPazos López, Juliana
dc.contributor.orcidPazos, Juliana [0000000332991825]spa
dc.contributor.researchgroupProbióticos, prospección funcional y metabolitos (Universidad Nacional de Colombia)spa
dc.contributor.researchgroupBiología de sistemas (Universidad Pontificia Bolivariana)spa
dc.date.accessioned2025-01-22T14:25:32Z
dc.date.available2025-01-22T14:25:32Z
dc.date.issued2024-01-21
dc.descriptionIlustracionesspa
dc.description.abstractLa genómica comparativa permite identificar elementos genéticos comunes y específicos de cepas de microorganismos. En el caso del género Lactobacillus spp, posibilita la identificación de rasgos asociados a actividad probiótica, a través de marcadores que brinden información de seguridad para el hospedero, respuesta al estrés, capacidad de adhesión y actividad antimicrobiana e inmunomodulatoria. Con el objetivo de identificar biomarcadores de actividad probiótica, se descargaron genomas completos de Lactobacillus spp de la base de datos Centro Nacional de Información Biotecnológica (NCBI, por sus siglas en inglés). Se realizó una predicción génica y anotación funcional para posteriormente agrupar proteínas ortólogas. Teniendo en cuenta el core-genoma, se seleccionaron 20 biomarcadores y se diseñaron sus respectivos primers. Para las amplificaciones de los biomarcadores, se extrajo ADN de cepas probióticas y patógenas, se realizaron PCRs individuales para cada gen y los amplicones obtenidos se confirmaron por medio de electroforesis y secuenciación. Como resultado, se descargaron 180 genomas de Lactobacillus spp pertenecientes a 29 especies diferentes, encontrando 34 cepas descritas como probióticas basados en la revisión bibliográfica. El promedio de CDS fue 2001, donde el 37,3% codifican para proteínas hipotéticas. En la anotación funcional, se obtuvo en promedio 913 COGs y 618 códigos de EC por genoma. Entre las cepas probióticas se obtuvo un pan-genoma y un core-genoma conformado por 4823 y 671 clústers de proteínas, respectivamente. Se lograron amplificar 8 biomarcadores asociados a metabolismo de carbohidratos, resistencia al estrés, interacción con células hospedero, metabolismo de aminoácidos. (Texto tomado de la fuente)
dc.description.abstractComparative genomics makes possible to identify common and specific genetic elements of strains of microorganisms. In the case of the genus Lactobacillus spp, it enables the identification of traits associated with probiotic activity, through markers that provide safety information for the host, response to stress, adhesion capacity and antimicrobial and immunomodulatory activity. In order to identify biomarkers of probiotic activity, complete genomes of Lactobacillus spp were downloaded from the NCBI database. Gene prediction and functional annotation were performed to subsequently group orthologous proteins. Taking into account the core-genome, 20 biomarkers were selected and their respective primers were designed. For the amplifications of the biomarkers, DNA was extracted from probiotic and pathogenic strains, individual PCRs were performed for each gene and the amplicons obtained were confirmed by electrophoresis and sequencing. As a result, 180 Lactobacillus spp genomes belonging to 29 different species were downloaded and 34 strains were described as probiotic based on the literature review. The average CDS was 2001, where 37.3% encoded hypothetical proteins. In the functional annotation, an average of 913 COGs and 618 EC codes were obtained per genome. Among the probiotic strains, a pan-genome and a core-genome were obtained consisting of 4823 and 671 protein clusters, respectively. It was possible to amplify 8 biomarkers associated with carbohydrate metabolism, stress resistance, interaction with host cells, and amino acid metabolism.
dc.description.curricularareaÁrea curricular Biotecnologíaspa
dc.description.degreelevelMaestríaspa
dc.description.degreenameMagíster en Ciencias - Biotecnologíaspa
dc.description.methods3. Metodología 3.1 Selección y descarga de genomas de Lactobacillus Los genomas en formato FASTA fueron descargados de la base de datos GenBank del NCBI (20 de enero de 2023). Como criterio de inclusión, se consideró el nivel de ensamblaje, seleccionando únicamente aquellos genomas reportados como completos y ensamblados a nivel de cromosoma, según la base de datos. Los genomas se agruparon de acuerdo con su potencial probiótico en aislados con actividad probiótica demostrada y aislados sin actividad probiótica, basado en la revisión bibliográfica. 3.2 Predicción génica y anotación funcional Como los genomas provinieron de diferentes estudios genómicos desarrollados por diferentes instituciones a nivel del mundo entre ellos Rusia, Corea, Emiratos Árabes Unidos, entre otros. Se realizó una homologación en la anotación de los genes; para esto se llevó a cabo una predicción de los marcos de lectura codificantes para proteínas y su respectiva anotación por medio del programa PROKKA v1.14.5 (Seemann, 2014) siguiendo los parámetros por defecto para genomas bacterianos Gram positivos. La anotación funcional se basó en el número EC y los COGs. Para la identificación de proteínas involucradas en virulencia o resistencia a antibióticos, se realizó una comparación por homología mediante el programa BLASTP (Altschul et al., 1990) teniendo en cuenta un valor de E < 1e-6, un porcentaje de identidad del 90% (percentage of identical matches) en el 90% de la proteína (query coverage) y las bases de datos VFDB (B. Liu et al., 2022) CARD (B. Jia et al., 2017) para factores de virulencia y resistencia a antibióticos, respectivamente. También, se realizó la detección de bacteriocinas por medio del servidor web BAGEL4 y el algoritmo BLASTX (Van Heel et al., 2018) usando los parámetros por defecto. 3.3 Identificación de proteínas comunes y específicas de aislados probióticos y aislados sin actividad probiótica demostrada Se calculó el pan-genoma y el core- genoma de los aislados probióticos (determinados por revisión bibliográfica), y se identificaron por medio de la estrategia de mejor hit recíproco de BLASTP implementada en el programa ORTHOMCL v2.0.9. (L. Li et al., 2003). Para determinar si las proteínas del core se compartían con los demás aislados de los cuales no se identificó potencial probiótico, se realizó un BLASTP teniendo en cuenta un porcentaje de identidad de 60 o 90% y un valor de E < 1e-6. 3.4 Selección de los marcadores y diseño de primers Para la selección de los marcadores primero se realizó una revisión bibliográfica de genes previamente descritos y relacionados con alguna actividad probiótica. Luego, se contrasto frente a los genes codificantes del core-genoma. Adicionalmente, se seleccionaron genes del core-genoma que estuvieran ausentes o presentes en algunos, no en todos, de los aislados sin información de actividad probiótica y que estuvieran relacionados a alguna funcionalidad relacionada a resistencia a estrés, metabolismo de carbohidratos, metabolismo de aminoácidos e interacción con células del hospedero. Finalmente, para el diseño de los cebadores se incluyeron marcadores para la identificación taxonómica a nivel de género; marcadores involucrados en funciones como interacción con células del hospedero, tolerancia al estrés, actividad antagónica (bacteriocinas) frente a patógenos, metabolismo de carbohidratos, metabolismo de aminoácidos y obtención de energía; marcadores de seguridad para el hospedero como genes de resistencia para la tetraciclina y la lincosamida. Todos los marcadores fueron alineados a nivel de nucleótidos usando el programa MUSCLE v5 (Edgar, 2022), para lo cual se incluyó la secuencia completa del gen de cada uno de los aislados probióticos. En el caso de los genes de resistencia a antibióticos y las bacteriocinas, se alinearon solo las secuencias de los aislados que contenían este tipo de genes. El diseño de los primers se realizó manualmente sobre las regiones más conservadas del gen siguiendo las recomendaciones para el diseño de primers (Dieffenbach et al., 1993). En la Tabla 3-1 Se observan los diferentes primers diseñados con su respectiva secuencia, funcionalidad, temperatura de alineamiento, concentración de primers usada en las pruebas moleculares y código del primer. 3.5 Cepas bacterianas de estudio Se emplearon 5 cepas probióticas y 2 cepas patógenas para el estudio. Las 5 cepas probióticas (BAL) fueron proporcionadas por la Universidad Nacional de Colombia, sede Medellín, del Laboratorio de Microbiología de Aguas y Alimentos. Estas se encontraban liofilizadas, fueron enriquecidas en caldo (MRS, Merck), se incubaron a 37°C durante 48 horas bajo condiciones de CO2. Luego, se cultivaron en un medio selectivo en Agar (MRS, Merck) y se incubaron a 37°C durante 72 horas bajo condiciones de CO2. Las 2 cepas patógenas empleadas fueron proporcionadas por la Universidad Pontificia Bolivariana que fueron Escherichia coli ATCC 25922 y Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhimurium ATCC 14028. Estas fueron enriquecidas en caldo Brain Heart Infusion (BHI, BD) a 35,4°C por 24 horas, luego se cultivaron en Agar Plate Count (PCA, BD) a 35,4°C por 24 horas. Posteriormente se conservaron en crioviales de preservación con 30 % v/v de glicerol y almacenadas a -20°C en el Laboratorio Bioambiental de la Universidad Pontificia Bolivariana. En la Tabla 3-2 se observan las 7 cepas bacterianas de estudio. También, se realizó la confirmación morfológica y bioquímica bacteriana de las BAL por medio de microscopia óptica con tinción de Gram, y la morfología de la colonia fue evaluada en el estereoscopio. Además, se determinó la presencia o ausencia de la enzima catalasa. Posteriormente fueron conservadas en caldo BHI con 30% v/v de glicerol y almacenadas a -20°C en el Laboratorio de Microbiología de Aguas y Alimentos de la Universidad Nacional de Colombia. o Tinción de Gram: Las cepas bacterianas BAL se clasificaron como bacilos Grampositivos individuales o en cadena (Smith & Hussey, 2016). o Actividad de la catalasa: Se tomó una colonia pura directamente del agar MRS, se colocó en un portaobjetos limpio y se le adicionó una gota de H2O2 al 10% v/v. Se observó formación de burbujas, resultado positivo (Reiner, 2013). Se centrifugaron a 10000 rpm por 5 min cada una de las 7 cepas. Posteriormente, se le adicionaron 300 μL de buffer de elución EB y 120 μL del buffer MG para lisar el pellet, se continuo con el proceso de extracción de ADN siguiendo las indicaciones del fabricante NucleoSpin® Microbial DNA, Bioanalysis (Macherey-Nagel, Alemania). 3.6 Extracción ADN a partir de cepas probióticas y patógenas El ADN bacteriano se extrajo mediante el protocolo del kit NucleoSpin® Microbial DNA, Bioanalysis (Macherey-Nagel, Alemania) siguiendo las recomendaciones del fabricante. 3.6.1 Evaluación de la calidad del ADN La calidad del ADN extraído se evaluó mediante la lectura de absorbancia a 260 y 280 nm utilizando un espectrofotómetro Nanodrop 2000 (Thermo Scientific™), con 7 muestras de ADN a partir del protocolo de extracción. La pureza de cada muestra de ADN se determinó calculando la relación de densidad óptica (DO) a 260/280 nm. 3.7 Estandarización de la amplificación por PCR de los genes candidatos Se utilizó un volumen final de la reacción de 50 μL para la estandarización de la amplificación por PCR. Para ello, se mezclaron a una concentración final: Buffer Taq 1X, 0,2 mM de dNTPs, 0,5 μM de primers, 1,25 U/μL de ExcelTaq ™Taq DNA polymerase SMOBIO y se adicionaron 2 μl de un pool de ADN que contenía 20 ng de ADN de cada una de las 5 cepas probióticas. Se corrió la PCR en un termociclador Bio-Rad Termal cycler C1000 Touch®, con el siguiente perfil térmico: un ciclo inicial de desnaturalización 95°C por 2 min, 35 ciclos de 94 ºC por 30 seg, se variaron las temperaturas de hibridación para identificar la temperatura acorde a cada pareja de primers (50-55-60 °C) respectivamente y se hizo una extensión a 72 ºC durante 30 seg. En esta estandarización de PCRs se utilizaron los perfiles de amplificación de los 22 primers que fueron seleccionados como biomarcadores con actividad probiótica, las 2 cepas patógenas de Escherichia coli ATCC 25922 y Salmonella enterica Subsp. enterica Serovar Typhimurium ATCC 14028 y el pool de cepas probióticas de estudio las cuales presentaron mayor concentración de ADN, estas fueron: (Lactobacillus paracasei 0068396), (Lactobacillus paracasei LPC- 37400 B), (Lactobacillus plantarum Lp- 115400 B) nombradas en la Tabla 3-2. Tabla 4-1. 3.7.1 Amplificación de los genes candidatos por PCRs Cada uno de los genes que durante la estandarización se obtuvo un amplicon, se amplificaron nuevamente, pero de forma individual cada cepa, teniendo en cuenta las siguientes condiciones: se utilizó un volumen final de la reacción de 50 μL, donde se mezclaron a una concentración final: Buffer Taq 1X, 0,2 mM de dNTPs, 1,25 U/μL de ExcelTaq ™Taq DNA polymerase SMOBIO y se adicionaron 2 μL de ADN que estaban en un rango de concentración entre 3,3 y 49,7 ng/μL. La concentración de primers utilizada de cada gen específico se puede ver descrita en la Tabla 3-1. Se corrió la PCR utilizando el siguiente perfil térmico: temperatura de desnaturalización de 95°C por 2 min, 35 ciclos de 94°C por 30 seg, se utilizó una temperatura de hibridación de 50°C o 65 °C dependiendo de la pareja de primers (ver tabla 3-4) y se hizo una extensión a 72°C durante 30 seg. 3.7.2 Electroforesis Los productos de amplificación de la PCR se separaron por electroforesis en geles de agarosa al 2% p/v y buffer TBE 1X a un voltaje de 5V/cm durante 60 min. Se visualizaron usando 2 μL del fluorocromo EZ-Vision 6X (VWR AMRESCO)., y 2 μL de marcador de peso molecular HypperLadder™ 50bp (Bioline). Se analizaron los geles en presencia de luz ultravioleta en un equipo de transiluminación (Benchtop 3UV™). 3.7.3 Secuenciación Se seleccionaron amplicones para confirmar median la secuenciación de ADN empleando el método de Sanger unidireccionalmente. Se utilizaron los primers descritos en la Tabla 3-1 para el secuenciamiento y fue llevado a cabo en Psomagen: Multiomics Services and Data Analysis EE. UU. Se analizaron manualmente los datos obtenidos del secuenciamiento, se realizó la limpieza de las secuencias teniendo en cuenta la calidad. Luego, se analizaron las secuencias usando el algoritmo BLASTX y base de datos de proteínas no redundantes del NCBI (National Center for Biotechnology Information).spa
dc.description.researchareaBiotecnología microbianaspa
dc.description.sponsorshipUniversidad Nacional de Colombiaspa
dc.description.sponsorshipUniversidad Pontificia Bolivarianaspa
dc.description.sponsorshipFundación Juan Pablo Gutiérrez Cáceresspa
dc.format.extent178 páginasspa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.instnameUniversidad Nacional de Colombiaspa
dc.identifier.reponameRepositorio Institucional Universidad Nacional de Colombiaspa
dc.identifier.repourlhttps://repositorio.unal.edu.co/spa
dc.identifier.urihttps://repositorio.unal.edu.co/handle/unal/87346
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad Nacional de Colombiaspa
dc.publisher.branchUniversidad Nacional de Colombia - Sede Medellínspa
dc.publisher.facultyFacultad de Cienciasspa
dc.publisher.placeMedellín, Colombiaspa
dc.publisher.programMedellín - Ciencias - Maestría en Ciencias - Biotecnologíaspa
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dc.subject.ddc570 - Biologíaspa
dc.subject.proposalGenómica comparativa
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dc.subject.wikidataProbióticos
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dc.subject.wikidataBiomarcadores
dc.titleEstudio de genómica comparativa para la identificación de biomarcadores con actividad probiótica en el género bacteriano Lactobacillus spp
dc.title.translatedComparative genomics study for the identification of biomarkers with probiotic activity in Lactobacillus spp.
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oaire.awardtitleEstudio de genómica comparativa para la identificación de biomarcadores con actividad probiótica en Lactobacillus sppspa

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